Méthode RAMP : évaluer les poissons avant leur remise à l’eau

Un poisson vivant au moment de sa remise à l’eau n’est pas nécessairement indemne des effets de la capture. Fatigue, exposition à l’air, variation de température, compression, barotraumatisme ou blessures peuvent altérer son comportement et contribuer à une mortalité différée. La méthode RAMP, pour Reflex Action Mortality Predictor, propose d’observer rapidement des réflexes définis afin de quantifier cette altération. Simple en apparence, elle n’est fiable que si ses tests sont adaptés à l’espèce et reliés à un suivi de survie pertinent.

Observer une fonction intégrée plutôt qu’un seul marqueur

Les analyses sanguines renseignent sur certains mécanismes physiologiques, mais elles demandent du matériel, du temps et une manipulation supplémentaire. L’observation des réflexes vise une autre échelle : elle examine la capacité immédiate de l’animal à produire une réponse coordonnée. Le redressement, l’évitement, le suivi visuel, la ventilation ou la réaction à une stimulation peuvent révéler une altération neuromusculaire globale.

Dans un protocole RAMP, chaque réponse est généralement notée comme présente ou absente. La proportion de réponses altérées forme un score d’incapacité réflexe. Un score élevé signifie que davantage de réflexes testés sont absents ; il ne signifie pas automatiquement qu’une proportion identique de poissons mourra. La relation avec la survie doit être établie statistiquement pour la population, l’engin, les conditions environnementales et la durée de suivi considérés.

Une littérature étendue, mais très hétérogène

La synthèse publiée en 2024 par Robert Lennox et ses collègues a recensé 136 études utilisant des indicateurs de vitalité dans le contexte des pêches. Quatre-vingt-dix concernaient le milieu marin et 46 l’eau douce. Les altérations réflexes étaient les indicateurs les plus fréquemment étudiés, devant ou avec les blessures visibles, les signes de barotraumatisme, la ventilation et l’activité.

Cette diversité confirme l’intérêt opérationnel de mesures réalisables sur le terrain. Elle montre aussi qu’un résultat ne se transpose pas directement d’une espèce à une autre. La morphologie, l’écologie, la température, la profondeur de capture et la stratégie comportementale modifient à la fois la réponse au stress et la pertinence d’un réflexe. Certains travaux portent sur des poissons, d’autres sur des crustacés ou des tortues ; le terme RAMP recouvre donc des batteries de tests différentes.

Choisir des réflexes robustes et reproductibles

Un bon test doit provoquer une réponse attendue chez un animal non altéré, être rapide, peu invasif et interprétable de la même manière par plusieurs observateurs. Le réflexe de redressement est souvent évalué en plaçant brièvement le poisson dans une position inhabituelle dans l’eau et en observant son retour à l’orientation normale. D’autres tests apprécient la réaction des yeux au mouvement du corps, la fuite à l’approche d’un objet ou la stabilité de la ventilation.

Il faut toutefois éviter une liste standard appliquée mécaniquement. Chez la sébaste à courtes épines (Sebastolobus alaskanus), Rodgveller, Löhr et Dimond ont testé 21 poissons après capture en profondeur. Sur le pont, le redressement était réussi par 43 % des individus, auxquels s’ajoutaient 19 % de réponses lentes ; après maintien en laboratoire, tous les poissons évalués réussissaient ce test. À l’inverse, la saisie de la queue, le réflexe pharyngé et l’écartement operculaire étaient présents chez 95 à 100 % des poissons dès le pont. Ces contrastes montrent que tous les réflexes n’ont pas la même sensibilité au même stress.

Relier le score au devenir réel des animaux

RAMP devient un prédicteur de mortalité seulement lorsqu’un protocole associe les scores initiaux à une observation ultérieure. Celle-ci peut reposer sur un maintien contrôlé, de la télémétrie, des marques ou une autre méthode adaptée. La durée doit couvrir la période où les effets différés sont plausibles. Un suivi trop court risque de classer comme survivant un poisson qui meurt plus tard ; un maintien artificiel peut, à l’inverse, introduire ses propres contraintes.

La synthèse de 2024 souligne que les indicateurs de vitalité ne prédisent pas toujours la survie. Leur performance varie selon le taxon, le contexte et la méthode. Blessures et réflexes peuvent aussi fournir des informations complémentaires : une lésion localisée n’abolit pas nécessairement un réflexe immédiat, tandis qu’un poisson sans blessure visible peut présenter une incapacité fonctionnelle importante.

Un outil pour comparer les pratiques de capture

Lorsque le protocole est validé, le score permet de comparer des facteurs modifiables : durée de lutte, temps de manipulation, exposition à l’air, type d’engin, profondeur, température ou technique de remise à l’eau. Une étude récente sur le bar rayé (Morone saxatilis) en pêche récréative côtière a ainsi associé des durées plus longues de lutte, de manipulation et d’exposition à l’air à davantage d’altérations réflexes. La taille des poissons et la température de l’eau contribuaient également au score dans les conditions testées.

Ce type de résultat doit rester contextualisé. Dans cette étude, tous les poissons ont survécu pendant les vingt minutes de surveillance après remise à l’eau. L’altération réflexe renseignait donc sur l’effet cumulé de la capture et sur l’activité à court terme, sans démontrer une mortalité dans cette fenêtre. Elle peut servir de signal d’alerte ou de critère comparatif, mais ne remplace pas un suivi suffisamment long lorsque l’objectif est d’estimer la mortalité.

Standardiser le terrain sans alourdir la manipulation

La qualité des données dépend de détails concrets. Les observateurs doivent disposer de définitions précises, d’une formation commune et, si possible, d’un contrôle de concordance. L’ordre des tests, le temps écoulé depuis la sortie de l’engin, la température, la durée hors de l’eau et les blessures doivent être consignés. Les tests sont réalisés rapidement, avec les mains ou surfaces humides et en limitant toute exposition supplémentaire.

La vidéo peut faciliter la vérification a posteriori, mais elle ne doit pas prolonger la manipulation. Les réponses ambiguës doivent être prévues dans le plan d’analyse : forcer un choix présent/absent sans règle partagée crée une précision artificielle. Un essai pilote sur des animaux témoins permet d’écarter les réflexes spontanément variables ou difficiles à observer.

Ce que Vetofish peut apporter

Vetofish peut accompagner les gestionnaires, bureaux d’étude et équipes scientifiques dans la construction d’un protocole de vitalité adapté. L’intervention peut couvrir le choix des réponses comportementales, la définition des fiches de terrain, la formation des observateurs, l’intégration des paramètres environnementaux et la stratégie de validation par suivi différé.

L’objectif n’est pas d’ajouter des gestes à toute remise à l’eau, mais de produire une mesure utile sans aggraver le stress. Bien conçu, un protocole RAMP aide à identifier les pratiques les moins pénalisantes, à interpréter les captures scientifiques ou accidentelles et à documenter les décisions de gestion. Il reste un indicateur calibré, jamais un verdict universel sur le devenir d’un poisson individuel.

Références

• Lennox RJ, Donaldson MR, Raby GD, Cook KV, LaRochelle L, Madden JC, Cooke SJ, Patterson DA, Hinch SG. “Using vitality indicators to predict survival of aquatic animals released from fisheries.” Conservation Physiology. 2024;12(1):coae034. doi:10.1093/conphys/coae034.
• Rodgveller C, Löhr CV, Dimond JA. “Effects of capture on acute and long-term reflex impairment, survival, and health of a deepwater fish: Shortspine thornyhead (Sebastolobus alaskanus).” PLOS ONE. 2022;17(10):e0276132. doi:10.1371/journal.pone.0276132.
• Griffin LP, Brownscombe JW, Gagne TO, et al. “Effects of capture and handling on striped bass (Morone saxatilis) in the recreational fishery of coastal Massachusetts.” Fisheries Research. 2025;288:107459. doi:10.1016/j.fishres.2025.107459.